• 43.12 KB
  • 33页

手性污染物六溴环十二烷在食物链传递中的选择性及生物放大作用研究进展

  • 33页
  • 当前文档由用户上传发布,收益归属用户
  1. 1、本文档共5页,可阅读全部内容。
  2. 2、本文档内容版权归属内容提供方,所产生的收益全部归内容提供方所有。如果您对本文有版权争议,可选择认领,认领后既往收益都归您。
  3. 3、本文档由用户上传,本站不保证质量和数量令人满意,可能有诸多瑕疵,付费之前,请仔细先通过免费阅读内容等途径辨别内容交易风险。如存在严重挂羊头卖狗肉之情形,可联系本站下载客服投诉处理。
  4. 文档侵权举报电话:19940600175。
手性污染物六溴环十二烷在食物链传递中的选择性及生物放大作用研究进展2016年11月November2016ROCKANDMINERALANALYSIS岩矿测试Vol.35,No.6569-57835(6):569-578.TIANQin,TONGLing,SONGShu-ling,etal.ResearchProgressontheSelectivityandBiomagnificationofChiralHexabromocyclododecanesPollutantsinFoodChainTransfer[J].RockandMineralAnalysis,2016,35(6):569-578.【DOI:10.15898/j.cnki.11-2131/td.2016.06.002】手性污染物六溴环十二烷在食物链传递中的选择性及生物放大作用研究进展田芹佟玲宋淑玲战楠1,潘萌邱静2(1.国家地质实验测试中心,北京100037;2.中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所,北京100081)摘要:六溴环十二烷(HBCDs)是一种全球生产的添加型溴化阻燃剂,被广泛应用于隔热建筑材料阻燃剂、室内装潢、纺织品和电子产品中,不仅对生态环境造成污染,而且还会通过食物链的传递危害人类健康。研究生态系统中HBCDs——————————————————————————————————————————————— 异构体及对映体的环境行为与生物放大作用是进行环境风险评估和有效控制污染的生态学基础。基于此,本文从HBCDs的基本特性出发,阐述了HBCDs异构体及对映体在食物链中的选择性生物富集放大及转化行为,分析了发生选择性富集及转化的影响因素,这些因素包括生物体的生活环境、饮食习惯、所处食物链中营养级水平以及HBCDs选择性吸收、代谢和异构化等。已有的研究报道显示HBCDs异构体及对映体在生态系统中的富集、转化及生物放大行为不是单一的过程,是生物体和环境多因素综合的结果。今后应对HBCDs异构体及对映体在各种食物链(如淡水食物链和陆生食物链)中的选择性环境行为以及在食物链传递中发生选择性的主控因素等方面进行深入系统的研究,为全面评价其生态风险提供科学依据。关键词:六溴环十二烷;食物链;对映体选择性;生物放大作用中图分类号:0625.21文献标识码:A添加型阻燃剂六溴环十二烷(HBCDs)是除了多溴联苯醚(PBDEs)、四溴双酚A(TBBPA)之外的全球第三大溴代阻燃剂,在大气、沉积物、土壤、鱼、鸟、母乳以及北极地区都被检出[14]。近年来,环境介质中HBCDs异构体及对映体的研究多为针对水生生物、鸟类等个体的分散研究,主要关注HBCDs对个体生命指标的影响以及对局部组织造成的危害,而对生态系统食物链的研究,主要有以下三个方面:①HBCDs在海洋、淡水湖泊生态系统食物链中的选择性富集及营养级放大因子研究;②111^〇8在陆生生物鸟类、陆地猛禽食物链中的选择性环境行——————————————————————————————————————————————— 为及生物放大作用研究;③HBCDs在水生食物链中发生选择性富集及营养级迁移原因探索。HBCDs的广泛使用,危害着生态环境和人类健康。已有研究表明HBCDs为肝酶诱导剂、发育神经毒剂、内分泌干扰物等,能引起甲状腺功能减退[1°_11];而且HBCDs能够通过母亲传递到婴儿身上[12],在胎肝、胎盘中都有发现[13]。生态系统是生物与环境构成的统一整体,HBCDs污染必然对生态系统中的生物构成伤害,并有可能通过食物链传递,进而影响更高级的生物从而威胁人类健康。明确HBCDs在食物链生物内中吸收、累积、转化与传递收稿日期:2016-08-25;修回日期:2016-10-11;接受日期:2016-11-16基金项目:国家自然科学基金资助项目(21307018,41171370,41473008);中国地质调查局地质调查项目(DD20160095-5);中国地质科学院基本科研业务费项目(CSJ201601)作者筒介:田芽,博士,副研究员,主要从事有机污染物分析技术及应用研究。E-mail:tqname81@163.com。一569—第6期k石^丨!11试http;//www.ykcs.ac.cn2016年过程及影响因素,对于认识HBCDs的迁移行为,评——————————————————————————————————————————————— 价其在生态系统污染的风险具有重要意义。目前关于HBCDs在食物链传递中的环境行为及生物放大作用的研究将会持续成为国内外学者关注的热点。为此,本文综述了当前研究进展,探讨了HBCDs在食物链中的研究趋势。1HBCDs及其异构体基本特性HBCDs由1,5,9-环十二烷三烯(1,5,9-CDTs)异构体经溴化反应制得,理论上可以形成16种立体异构体,其中包括6对对映异构体及4个非对映异构体。但目前只从环境中检测出8种异构体,包括三对对映异构体(±)-a-HBCD、/3-賦0和y-HBCD,以及2个非对映异构体5-HBCD和e-HBCD0其中,y-HBCD是工业品的主要组成成分,占HBCDs总量的75%~89%,其次是a-HBCD(占10%~13%)和-HBCD(占1%~12%)。当温度高于160°C时,HBCDs将发生热重排反应,得到由三种异构体组成的特殊混合物(78%的a-HBCD,13%的-HBCD和9%的y_HBCD)[14],如图1所示;当温度超过240°C时,HBCDs会发生脱溴降解。商品化的HBCDs主要由三种异构体组成,由于异构体空间结构上的差异性,导致三种异构体的物理化学性质(如极性、偶极矩、水溶性)有一定程度的差异。HBCDs的热稳定性较差,分解温度低。21°C时HBCDs的蒸气压为6.27x10_5Pa,这表明其挥发性非常低,在水的表面具有轻微挥发性;辛醇-水分配系数1%1_为5.625(25°C),存在着在生物体内累积的潜力;土壤有机碳分配系数)为——————————————————————————————————————————————— 1.25父105;水中^-1^。0、/3-1^。0、7-1^。0的溶解度分别为48.8|xg/L、14.7|xg/L、2.08|xg/L,这一性质差异可能导致它们不同的生物摄取率、新陈代谢率以及毒性效应,进而影响它们的环境行为[15]。研究表明,HBCDs对玉米早期生长毒性顺序是a-HBCD>/3-HBCD>y-HBCD[16],而在斑马鱼中的发育毒性和HePG2的细胞毒性顺序则均为y-HBCD>/3-HBCD>a-HBCD[17’。由于HBCDs的立体化学结构十分复杂,a-HBCD、/3-HBCD和y-HBCD具有各自的物理化学性质,导致它们在生物体内的转化和代谢途径不同,生物累积和生物放大特征明显差异。—570—图1HBCDs异构体在气相色谱仪进样口高温时的分解示意图[14]Fig.1RacemicdecompositionofHBCDdiasterioisomersinthegaschromatographerinjectors[14]a-HBCD、/3-HBCD和y-HBCD又都是手性化合物,以外消旋体形式使用于环境中,各对映体之间在环境和生物体内也表现出不同的对映体选择性行为及毒性效应。(+)-a-HBCD、/3-HBCD、-)-a-HBCD./3-HBCD,——————————————————————————————————————————————— y-HB⑶对斑马鱼HePG2细胞毒性更大[18]。2HBCDs异构体在食物链传递中的选择性生物放大作用研究食物链中营养级的关系可用生物放大效应来表示,所谓的生物放大是指某些不能在自然界中降解或难降解的化学物质,在环境中通过食物链的延长和营养级的増加在生物体内逐级富集,浓度越来越大的现象。污染物在食物链中的生物放大行为通常用生物放大系数(BMF)和营养级放大因子(TMF)等参数来评估。通过计算BMF和TMF值,可以研究污染物在食物链上的传递特征,定量评估污染物在生物体内和沿食物链的生物放大效应。2.1异构体的选择性生物放大差异及原因分析HBCDs三种异构体在食物链中的生物放大效应存在明显差异。Covaci等[19]总结了HBCDs在不同环境介质中的浓度水平、生物放大潜能等,通过数据分析发现,在污染点源附近环境介质(空气、沉积物和鱼)中的HBCDs浓度水平较高,在较高级的营第6期田芹,等:手性污染物六溴环十=烷在食物链传递中的选择性及生物放大作用研究进展海洋哺乳动物鸟鱼水生无脊椎动物悬浮颗粒物——————————————————————————————————————————————— 沉积物土水大气第35卷■a-HBCD■"-HBCD■7-HBCD养级动物如海洋哺乳动物和鸟类中发现HBCDs浓度较高,说明HBCDs在食物链中存在生物放大的潜能。每一'个重要发现是,y-HBCD是工业品中的主要成分,而ct-HB⑶是生物样品中的主要成分,并.且按水生无脊椎动物、海洋鱼类、淡水鱼类、鸟类和海洋哺乳类动物的次序,a-HBCD的比例依次增加,y-HBCDs异构体在环境中存在异构体选择性的生物图HBCD的比例依次降低。这一结果显示了020%40%60%80%分布比例100%转化、代谢行为。1。1^等[2°]通过对加拿大东部北2HBCDs三种异构体在食物链和不同环境介质中的极海洋中食物链的调查发现,在沉积物-浮游动物(河鮮、虾等)-哺乳动物(6鲸、独角鲸等)食物链中发现,随f淡级的增加,a-HBCD浓度增大,而〇/-HB⑶浓度降低,说明a-HBCD存在生物累积和生物放大作用。1等[21]对我国南方电子垃圾隱收地淡水食物链的研究发现,随着食物链营养级升高,a-HBCD比例升高,y-HB——————————————————————————————————————————————— ⑶比例降低。a-HBCD在水中占80.2%~83%,在工业品中只占10%~13%,,主要是由|这兰种异构体中a-HBCD在水中的溶解度最大,导致a-HBCD在水中分配平衡时比例最大,a-HBCD在悬浮颗粒物中的水平(33.7%-55.1%)比工业品和沉积物中的水平(31.6%~42.6%)显著增高,这种不同主要是?由f在电子垃圾处理时热异构体化或沉积物中发生生物降解造成的。HBCDs三种异构体在生态系统环境中分布比例见图2。21^0〇3和《-1^0〇随营养级增加,生物放大行为不是一个简单的过程,是多因素综合的结a果HBCD,在水生食物链的髙营养级捕食者中,-是其主要成分,这种现象主要是由于a-HBCD比y-HBCD有相对高的水溶性,在食物链传递中优先被吸收,导致a-HBCD通过水相到生物中被优先富集,还有一些其他原因,包括0-HBCD和y-HBCD被食物链高端生物体快速代谢以及异构体转化等;另一方面,一^食物链低端生物,栖息在水体底部,与悬浮颗粒物和沉积物直接接触或摄取,导致y-HB⑶比例含量较高5类似的,随着食物链营养级的升高,a-HBCD比例升禽,y-HB⑶比例降低,这一特征在荷兰西部Scheld河1口底栖和浮游生物食物链[22]、北海河口水生食物链[23]以及天津湖泊和海洋食物链[24]中都被发现。2.2——————————————————————————————————————————————— 异构体的生物放大系数差异及原因分析生物放大系数(BMF)常常用来定量评估生物分布比例Fig.2DiastereomerprofilesofHBCDs,givenaspercentageoftotalHBCDs,averagedforsamplesofair,water,soil,sediment,suspendedparticles,invertebrates,fishandmammals[19,21]放大效应的程度。BMF,即某一捕食者体内的浓度和一个特定的被捕食者体内浓度的比值#国内外学者发现了HBCDs异构体在食物链中具有不同的生物放大效应,在此基础上进一步评价了BMF值的大小<3Law等:_[25]对加拿大Winnipeg撕食物链中HBCDs研究发现,a-HBCD-HBCD和y-HBCD在金隱鱼/蚌中的生物放大系数(BMF)分别为8.2、1.0和0.3,但在淡水鳕鱼/蚌中的BMF值分别为1.9、5.0和2.9;Tomy等[26]在安大略湖食物链的研究中发现a-HBCD和y-HBCD在虹鳟鱼/灰西鲱、虹鳟鱼/胡瓜鱼、虹鳟鱼/杜父鱼、杜父鱼无脊椎动物Z)i;>〇rei?、杜父鱼/糠虾、胡瓜鱼/糠虾、胡瓜鱼/无脊椎动物汉pweia、灰西鲱/浮游生物中的BMF值分别为4.8和7.5、1.0和1.5、1.1和0.8、3.5和2.5、9.7和9.9、10.8和5.5、4.0和1.4以及0.4和〇?2;在老鼠-鹗捕食关系中,a-HBCD的BMF值为16,显示出鸮对a-HBCD具有明显的生物放大效应^然而在麻雀-红隼捕食关系中,a-HBCD的BMF值为0?〇7,表明红隼对HBCDs的生物稀释,这与大部分水生食物链的生物放大行为不一致[27]。甚至某些同物种捕食关系的BMF值也量现很大的差异。例如,S0rm——————————————————————————————————————————————— 。等[28]报道了HBCDs在环斑海豹、北极鳕中的BMF值约为11;然而Tomy等[29]报道同样捕食生物的BMF值仅为0.1。有趣的是,在加拿大东部北极海洋食物链[2〇]北极鳕鱼中a-HBCD占主要成分,然而在其西部北极海洋食物链⑵]北极鳕鱼中y-HBCD却是其主要成分,初步分析其原西认为是生态地理环境的不同所造成的,第6期岩矿测试http;www.ykcs.ac.cn//2016年需要进一步研究。由此可见,生物样品中的HBCDs在食物链传递的过程中,在不同营养级的生物体内HBCDs三种异构体的生物放大系数产生很大的差异,主要是因为HBCDs三种异构体由于其结构和水溶性不同,具有异构体选择性、物种差异性以及生物在食物链营养级水平及外部生存环境有关,是一个非常复杂的环境和生物过程。2.3异构体的营养级放大因子研究(S3M)^钱SQ°gHw;/°°u——————————————————————————————————————————————— 营养级水平营养级放大因子(TMF)是目前另一个常用来评价污染物在食物链中生物放大行为的参数[3°]。TMF,即污染物在食物链中营养级单位増加浓度的比值,由浓度-营养级曲线的斜率得出[26]。营养级水平(TL)与a-HBCD浓度对数呈正相关,说明具有营养级放大作用,在食物链中已有报道。如加拿大东部北极海洋食物链[2°]中a-HBCD对营养级水平显示很强正相关,TMF值为2。挪威西部海洋食物链[31]报道了a-HBCD具有显著生物放大效应,TMF值为2.6[31]。加拿大安大略湖中SHBCDs的TMF值是6.3[26],是Winnipeg湖中a-HBCD(TMF值1.4)、/3-HBCD(TMF值1.3)和y-HBCD(TMF值2.2)的3~4倍[25]。类似的,在中国南方淡水食物链中a-HBCD的TMF值(2.2)也被报道[21]。图3是安大略湖中^HBCDs浓度对数与食物链营养级关系图。在意大利Maggiore湖中浮游动物-鱼的研究中发现[32],:SHBCDs的BMF值与TMF值呈正相关,具有生物放大作用。对于y-HBCD与营养级的关系在水生食物链中没有规律性,在加拿大Winnipeg湖食物链中y-HBCD浓度对数与营养级水平明显呈正相关[25],而在加拿大东部北极海洋食物链中具有明显负相关[2°],在挪威西部近海食物链[31]和中国南方淡水食物链[21]中没有明显相关性。y-HBCD与营养级水平的这种复杂关系主要由于食物链中生物累积的复杂性以及高营养级生物对y-HB⑶易于代谢造成的[33_34]。食物链结构、捕食者饮食多样性、呼吸及生理代谢等多因素导致这些HBCDs的TMF——————————————————————————————————————————————— 值的不同。迄今为止,对于HBCDs在所报道的水生食物链中具有不同的TMF值还没有给出明确的解释。2.4异构体的选择性富集差异模拟实验研究在食物链不同营养级中HBCDs三种异构体比例发生了很大的变化,生物体对三种异构体的体外—572—Diporeia—海底无脊椎动物;My仏一奸糖;sculpin—杜父鱼;alewife—灰西鲱;smelt—胡瓜鱼;trout—虹鳟鱼。图3安大略湖中SHBCDs浓度与食物链营养级关系图[26]Fig.3Mean(土standarderror)concentrations(ng/g,wetwt)ofXHBCDs(a-HBCD+y-HBCD)andtrophiclevelrelationshipfortheLakeOntariofoodweb叫途径(生物放大系数bmf、生物-底泥累积因子BSAF、生物富集因子BAF)和体内途径(吸收、分配、代谢、转化和排泄)都有可能构成异构体比例发生变化的原因。为了进一步解释这种现象产生的机理,寻找体外途径和体内途径的主导过程,国内外学者进行了一些研究,但大都局限于摄食暴露,还很少有实验去验证哪一个过程起到更重要的作用。Du等[35]报道了斑马鱼对a-HBCD的BMF值要高于-HBCD和y-HBCD,而-HBCD和y-HBCD的BMF值——————————————————————————————————————————————— 受染毒浓度的影响;并且发现y-HBCD能够转化为a-HBCD,与Li等[36]对蚯蚓体内的研究结果相一致。Luo等[37]报道了虎皮鱼-肉食性地图鱼食物链中HBCDs异构体比例在摄食工业品HBCDs过程中也呈现出明显的变化,用工业品HBCDs喂食虎皮鱼5天后,y-HBCD是其体内的主要成分;用虎皮鱼喂食地图鱼16天后再净化20天,研究发现,在暴露末期7-HBCD是地图鱼体内的主要成分,占63.3%,然后依次是a-HBCD(30.3%)、/3-HBCD(6.4%),而在净化末期a-HBCD是地图鱼中的主要成分,占62.6%,y-HBCD则下降到30.0%,通过分析发现7-HBCD转化为a-HBCD是造成这一'现象的主要原因。在土壤-植物的暴露I吴拟体系中发现,在萝卜和卷心菜的根中主要以y-HBCD为主,茎叶中则主要以a-HBCD为主[38]。水培玉米,单异构体暴露实验发现HBCDs三种异构体在玉米根中的浓度规律为-HBCD>a-HBCD>第35卷y-HBCD,而在茎中的浓度顺序S:yS-HBCD>y-HBCD>a-HBCD,没有发现异构体间转化现象[16]。由此可见,1?€〇8各异构体在自然界食物链不同营养级传递中环境行为存在很大差异,而其主导过程因素需要进一步研究。HBCDs对映体在蚯蚓的不同品种间也存在着差异。如Li等[36]研究发现赤子爱胜蚓选择性富集(-)-a-HBCD、(-)-yS-HBCD和(-)-y-HBCD,而威廉环毛蚓选择富集(+)-a-HBCD和(+)-0-1?(:〇,7-1?€〇对映体无明显选择性。对于y-HBCD,除了垃圾厂食用螺富集(-)-——————————————————————————————————————————————— y-HBCD之外['几乎所有生物都表现为选择性富集(+)-y-HBCD,而对于a-HBCD和p-HBCD,有报道显示富集(+)-对映体,有报道显示富集3HBCDs对映体在食物链传递中的选择性生物放大作用研究环境中常见的三种异构体a-HBCD、0-HBCD、y-HBCD都是手性分子,在工业品中以外消旋形式存在(对映体分数EF=0.5)。随着现代分析技术的发展,利用Nucleodex/3-PM手性液相色谱柱可以实现手性a-HBCD、p-HBCD、y-HBCD对映体的分离和检测[39]。研究手性污染物在对映体水平上的环境行为,必须明确单个对映体的环境行为,由于一般的物理化学转化过程不涉及对映异构体选择性,因此通常以EF值作为指示生物降解和代谢活动的重要指标。3.1对映体选择性的物种差异性研究工业品中HBCDs三种异构体的对映体之间除旋光性不一样之外,具有相同的物理化学性质,但经过食物链的传递,在不同营养级生物的作用下,表现出不同的毒性及富集、代谢行为。通过室内暴露模拟和野外调查显示HBCDS对映体选择性呈现明显的物种差异性。Du等[35]通过暴露实验考察了HBCDs在斑马鱼体内的累积和净化规律,结果显示在不同的取样时间a-HBCD和y-HBCD的EF值均与最初的暴露有显著的差异,表明了(+)-a-HBCD和(+)-y-HBCD——————————————————————————————————————————————— 对映体发生选择性富集。Luo等[37]在虎皮鱼-肉食性地图鱼食物链暴露工业品HBCDs的实验中发现,虎皮鱼中选择性富集(+)-a-HBCDfP(-)-yS-HBCD,(r〇y-HBCD没有明显选择性,地图鱼中选择性累积(+)-〇_HBCD、(-)-yS-HBCD和(+)-y-HBCD。Wu等[21]考察了淡水食物网中各种营养级动物体内的HBCDs累积情况,通过检测HBCDs各对映体含量,发现(+)-a-HBCD在鲮鱼和鲫的体内优先富集,(-)-yS-HB⑶在虾、鲮鱼和鲫组织中选择性累积,而在水蛇体内(+)-y-HBCD则为主要的组成成分。He等[4°]报道了中国南方电子拆解厂地区水生鸟中(+)-a-HBCDs被富集,而陆生鸟中(-)-a-HBCD^富集。(-)-对映体,说明生物体中HBCDs对映体的选择性富集具有物种特异性,是一个复杂的自身生理和外界环境的综合过程,如需氧和厌氧微生物的作用、生物体内发生对映体选择性吸收或代谢以及生存环境差异等,需要进一步研究影响HBCDs对映体选择性累积及放大过程的因素。3.2对映体选择性的食物源差异性研究HBCDs手性特征与生物所处食物链环境及食源暴露也有重要关联。雀形目鸟类[41]对三种HBCD异构体都显示出非外消旋特征,相对富集(-)-a-HBCD、(-)-0-HBCD、(+)-y-HBCD,鸟类肌肉组织中选择性富集(+)-y-HBCD,这种选择性富集并不完全意味着生物体内发生了选择性吸收或代谢过程,在肌肉和胃溶物中HBCDs的EF值相似,表明雀形鸟中食物摄入可能是HBCDs异构体非外消旋体分布的主要原因。He等[4°]对广东省清远地区鸟类样品的分析也发现——————————————————————————————————————————————— 了这一现象,在中国池鹭与其主要食物鱼中的a-HB⑶的EF值基本一致,说明中国池鹭的组织对HBCDs对映体的选择性富集可能是由食物继承而来的。Yu等[27]研究发现普通红隼体内^-HBCD的EF值为0.25,可以说其选择性富集(-)-a-HBCD,但与其主要猎物麻雀体内的EF值(0.12)相比明显增加,说明红隼应表现为选择性富集(+)-a_HBCD,或者说红隼对(_)_a_HBCD代谢能力高于(+)-a-HBCD,与只看EF值得出的结论相反。因此,非外消旋体的发现不能简单地归因于生物体内对映体选择性吸收、代谢或排泄,而与其食物源也有着重要关系。然而,自然环境中没有哪种捕食者的食物仅仅是一种生物,杂食物种更能代表HBCDs的营养级迁移,这些在后续的研究中都要考虑在内。573第6期岩矿测试http://www.ykcs.ac.cn2016年3.3对映体选择性的生态系统环境差异性研究由于生态系统的复杂性、食物链传递中的营养迁移以及物种特异性,对自然界食物链中生物体内HBCDS对映体选择性的解释要谨慎,即使在食物链生物体内未发现对映体选择性也应引起注意。JaMk等[42]发现鸠鸟体内a-HBCD的EF值为〇.53,接近于外消旋体,说明没有对映体选择性,但与其食物鲱鱼体内a-HBCD的EF值(0.24)相比,——————————————————————————————————————————————— 明显升高,因此鸠鸟应表现为选择性富集(+)-异显著,(+)-a-HBCD和(+)-y-HBCD对映体选择性富集。在净化过程中,(+)-a-HBCD代谢速度却比(-)-a-HBCD快;(+)-y-HB⑶代谢速度在低浓度时比(-)-y-HB⑶慢,而在高浓度时快于(-)-y-HBCD;而对于0-HBCD,整个过程基本上显示为外消旋混合物。在镜鲤暴露于HBCD单异构体实验中发现,在富集净化前期,a-HBCDJ-HBCD、y-HBCD三种异构体的EF值随着时间增加而增a-HBCD,说明高营养级的生物对具有对映体选择性的低营养级生物摄食过程中,有可能将其对映体选择性中和消失。张艳伟[9]在盐泽螺旋藻-罗非鱼食物链研究中发现,盐泽螺旋藻中a-HBCD呈现出明显的右旋选择性,yS-HBCD呈现出轻微的右旋选择性,而y-HBCD却没有明显的对映体选择性。在罗非鱼中,与盐泽螺旋藻的EF值对比,?_鼠〇和0_臓〇的EF值明显降低,表现出左旋对映体选择性,y-HBCD的EF值明显升高,表现出右旋对映体选择性,而与标准品相比却无明显对映体选择性。这也说明了随着营养级的升髙,EF值不只是有升高的趋势,也会形成降低的趋势。Luo等[37]在虎皮鱼-地图鱼食物链研究发现,随着营养级升高,a-HBCD和y-HBCD的EF值增力口,而0-HBCD的EF值降低。这也说明了HBCDs对映体选择性在食物链不同营养级中也不一定是一致性选择趋势,即使有些生物体内与标准品相比看似没有明显的选择性富集,但是在食物链传递中也不排除发生选择性的可能。3.4对映体选择性的生物体模拟实验研究——————————————————————————————————————————————— 食物链传递中生物体所处的环境以及体内选择性吸收、代谢、排泄和异构化过程都可能引起对映体选择性的积累,或者这些因素综合的结果,是一个比较复杂的环境生物过程,然而哪一个因素更为主要,目前还没有实验去证实,但国内外学者进行了积极的探讨。Esslingei?等[43]利用HBCDs单异构体进行老鼠肝脏微粒体体外代谢实验,发现(+)-a-HBCD的降解速率比(_)_a_HBCD快,(_)_y-HBCD的降解速率是(+)-y-HBCD的3倍,而对于yS-HBCD,两个对映体降解速率相同。Du等[35]通过暴露实验考察了HBCDs在斑马鱼体内的累积和净化规律,结果显示在不同的取样时间a_鼠。和y_HBCD的EF值均与最初的暴露差—574—大,然而在实验后期^-1?€0、1/-1?€0的对映体选择性有所下降,这是由于这两种异构体均转化成a-HBCD,而异构化形成的a-HB⑶具有明显较高的EF值。同时S-HBCD开始发生异构化的时间与其EF值发生轻微下降的时间一致,而且y-HBCD异构化形成的a-HBCD的EF值都低于a-HBCD实验组中的EF值,这些结果表明异构化过程存在着对映体选择性。由此可见,模拟实验只是特定实验条件下的结果,而HBCDs对映体在食物链传递中的选择性不仅仅是单一的过程,在未来的研究中须考虑到生态环境的复杂性,将野外调查与室内微宇宙模拟实验结合起来,给出更全面的解释。3.5对映体选择性营养级放大因子研究对映体在食物链传递中的迁移放大行为也有报——————————————————————————————————————————————— 道,并计算了相应的TMF值。^〇^等[2°]在加拿大东部北极海洋食物链的环境调查中发现,随着生物营养等级的增加,(-)-a-HBCD的浓度相对于营养级水平呈显著正相关,TMF值为2.2,a-HBCD的EF值随着营养级的增加而减少,说明在整个食物链传递过程中伴随着(-)-a-HBCD的选择性富集过程;在中国南方淡水食物链中[21],观察到(+)-a-HBCD、(-)-a-HBCD、(±)-a-HBCD和SHBCDs的生物放大行为,其TMF值分别为2.22、2.18、2.19和1.82。更多的关于对映体在食物链传递中的生物放大效应还需深入探索。4研究展望食物链中存在着非常复杂的异构体和对映体选择性环境行为。目前而言,国内外已经开展了一些关于HBCDs异构体及其对映体在生态系统食物链不同营养级中的选择性富集、代谢等环境行为的研究,但开展的研究工作还相差很多,尚没有形成对生第35卷态系统完整食物链的针对性研究。由于HBCDS是一种持久性溴系阻燃剂,它的生产和使用被禁止后仍然在环境中被检出,目前,HBCDS在建筑上的生产和使用可能延续到2024年[8],对生态环境的危害持久,同时HBCDs异构体及其对映体在生态系统中TheirMetabolitesinFishSerumfromanE-wasteSite,SouthChina[J].ArchivesofEnvironmentalContamination&——————————————————————————————————————————————— Toxicology,2014,67(3):348-357.[5]罗孝俊,吴江平,陈社军,等.多溴联苯醚、六溴环十二烷和得克隆的生物差异性富集及其机理研究进展[J].中国科学(化学),2013,43:291-304.影响因素复杂,对整个食物链开展系统性的研究,对LuoXJ,WuJP,ChenSJ,etal.Species-specific于准确评估HBCDs的环境风险及人类健康的影响BioaccumulationofPolybrominatedDiphenylEthers,HexabromocyclododecaneandDechloranePlusinBiota:具有非常重要的意义。综合已有的研究成果,今后AReview[J].ScientiaSinicaChimica,2013,43(3):食物链中的研究应重视以下几个问题。(1)目前对HBCDs在食物链中的研究大多集中在极地地区海洋食物链,在淡水和陆生食物链中的研究很少,特别是关于HBCDs在各种食物链中的行为特征(如生物放大因子、生物放大模型等)研究很少。应加强一些典型污染区域、各种类型食物链(淡水食物链和陆生食物链)中HBCDs生物放大作用研究,全面评价HBCDs的生态风险。(2)从研究结果来看,影响HBCDs异构体及对映体在食物链中选择性累积与放大的因素很多,也较复杂,但其主导因素至今尚未定论。因此,在以后的研究中应考虑到生态系统和自身生物过程的复杂性,如食物链长度、生物体饮食多样性等,与室内微——————————————————————————————————————————————— 宇宙模拟实验结合起来,给出更全面的解释。(3)HBCDs对映体在食物链传递中的迁移放大行为研究较少。HBCDs的三对对映体,其毒性和环境行为都存在很大差异,研究食物链营养级水平与HBCDs对映体之间的关系更能准确地反映其生物放大效应。因此,应加强HBCDs在对映体水平上在食物链传递过程中的生物放大作用研究。5参考文献[1]SonMH,KimJK,ShinES,etal.Diastereoisomer-andSpecies-specificDistributionofHexabromocyclododecane(HBCD)inFishandMarineInvertebrates[J].JournalofHazardMaterials,2015,300:114-120.[2]LawRJ,CovaciA,HarradS,etal.LevelsandTrendsofPBDEsandHBCDsintheGlobalEnvironment:StatusattheEndof2012[J].EnvironmentInternational,2014,65(2):147-158.[3]VorkampK,BossiR,RigetFF,etal.NovelBrominatedFlameRetardantsandDechloranePlusinGreenlandAirandBiota[J].EnvironmentalPollution,2015,196:284-291.[4]ZengYH,LuoXJ,ZhengX,etal.Species-specificBioaccumulationofHalogenatedOrganicPollutantsand291-304.[6]AbbasiNA,MalikRN,FrantzA,etal.AReviewonCurrentKnowledgeandFutureProspectsofOrganohalogenContaminants(OHCs)inAsianBirds——————————————————————————————————————————————— [J].ScienceoftheTotalEnvironment,2016,542(PartA);411-426.[7]YuG,BuQ,CaoZ,etal.BrominatedFlameRetardants(BFRs):AReviewonEnvironmentalContaminationinChina[J].Chemosphere,2016,150:479-490.[8]KochC,Schmidt-KottersT,RuppR,etal.ReviewofHexabromocyclododecane(HBCD)withaFocusonLegislationandRecentPublicationsConcerningToxicokineticsandDynamics[J].EnvironmentalPollution,2015,199:26-34.[9]张艳伟.六溴环十二烷异构体及其对映体的环境分布与生物富集[D].天津:南开大学,2014.ZhangYW.EnvironmentalDistributionandBioaccumulationofHexabromoclododecaneDiastereomersandEnantiomers[D].Tianjin:NankaiUniversity,2014.[10]HendriksHS,WesterinkRHS.NeurotoxicityandRiskAssessmentofBrominatedandAlternativeFlameRetardants[J].NeurotoxicologyandTeratology,2015,52(PartB):248-269.[11]MilleraI,SerchibT,CambierbS,etal.Hexabromocyclo-dodecane(HBCD)InducedChangesintheLiverProteomeofEu-andHypothyroidFemaleRats[J].ToxicologyLetters,2016,245:40-51.[12]KimUJ,OhJE.TetrabromobisphenolAandHexabromocyclododecaneFlameRetardantsinInfant-MotherPairedSerumSamples,andTheir——————————————————————————————————————————————— RelationshipswithThyroidHormonesandEnvironmentalFactors[J].EnvironmentalPolluttion,2014,184(1):193-200.[13]RawnDFK,GaertnerDW,WeberD,etal.Hexabromo-cyclododecaneConcentrationsinCanadianHumanFetalLiverandPlacentalTissues[J].ScienceoftheTotalEnvironment,2014,468-469C:622-629.[14]BarontiniF,CozzaniV,PetarcaL.ThermalStabilityandDecompositionProductsofHexabromocyclododecane—575—第6期岩矿测试http://www.ykcs.ac.cn2016年[15][16][J].Industrial&EngineeringChemistryResearch,2003,40(15):3270-3280.HunzikerRW,GonsiorS,McGergorJA,etal.FateandEffectofHexabromocyclododecaneintheEnvironment[J].OrganohalogenCompounds,2004,66:2300-2305.WuT,WangS,HuangH,etal.Diastereomer-specificUptake,Translocation,andToxicityofHexabromocyclo-dodecaneDiastereoisomerstoMaize[J].JournalofAgricultural&FoodChemistry,2012,60(34):8528-[25][26]——————————————————————————————————————————————— [JJ.Chemosphere,2013,93(8):1561-1568.LawK,HalldorsonT,DanellR,etal.BioaccumulationandTrophicTransferofSomeBrominatedFlameRetardantsinaLakeWinnipeg(Canada)FoodWeb[J].EnvironmentalToxicology&Chemistry,2006,25(8):2177-2186.TomyGT,BudakowstiW,HalldorsonT,etal.Biomagnificationofa-andy-HexabromacyclododecaneIsomersinaLakeOntarioFoodWeb[J].Environmental8534.[17]DuM,ZhangD,YanC,etal.DevelopmentalToxicityEvaluationofThreeHexabromocyclododecaneDiastereoisomersonZebrafishEmbryos[J].AquaticToxicology,2012,112-113(2):1-10.[18]ZhangX,YangF,XuC,etal.CytotoxicityEvaluationofThreePairsofHexabromocyclododecane(HBCD)EnantiomersonHepG2Cell[J].ToxicologyinVitro:AnInternationalJournalPublishedinAssociationwithBivra,2008,22(6):1520-1527.[19]CovaciA,GereckeAC,LawRJ,etal.Hexabromocy-clododecanes(HBCDs)intheEnvironmentandHumans:AReview[J].EnvironmentalScience&Technology,2006,40(12):3679-3688.[20]——————————————————————————————————————————————— TomyGT,PleskachK,OswaldT,etal.EnantioselectiveBioaccumulationofHexabromocyclododecaneandCongener-specificAccumulationofBrominatedDiphenylEthersinanEasternCanadianArcticMarineFoodWeb[J].EnvironmentalScience&Technology,2008,42(10).3634-3639.[21]WuJP,GuanYT,ZhangY,etal.TrophodynamicsofHexabromocyclododecanesandSeveralOtherNon-PBDEBrominatedFlameRetardantsinaFreshwaterFoodWeb[J].EnvironmentalScience&Technology,2010,44(14):5490-5495.[22]BrandsmaSH,LeonardsPEG,LeslieHA,etal.TracingOrganophosphorusandBrominatedFlameRetardantsandPlasticizersinanEstuarineFoodWeb[J].ScienceoftheTotalEnvironment,2015,505:22-31.[23]MorrisS,AllchinCR,ZegersBN,etal.DistributionandFateofHBCDandTBBPABrominatedFlameRetardantsinNorthSeaEstuariesandAquaticFoodWebs[J].EnvironmentalScience&Technology,2004,38(21):5497-5504.[24]ZhangY,SunH,LiuF,etal.HexabromocyclododecanesinLimnic——————————————————————————————————————————————— andMarineOrganismsandTerrestrialPlantsfromTianjin,China:Diastereomer-andEnantiomer-specificProfiles,Biomagnification,andHumanExposure576Science&Technology,2004,38(8):2298-2303.[27]YuL,LuoX,ZhengX,etal.OccurrenceandBiomagnificationofOrganohalogenPollutantsinTwoTerrestrialPredatoryFoodChains[J].Chemosphere,2013,93:506-511.[28]S0rmoEG,SalmerMP,JenssenBM,etal.Biomagni-ficationofPolybrominatedDiphenylEtherandHexabromocyclododecaneFlameRetardantsinthePolarBearFoodChaininSvalbard,Norway[J].EnvironmentalToxicology&Chemistry,2006,25:2502-2511.[29]TomyGT,PleskachK,FergusonSH,etal.Trophody-namicsofSomePFCsandBFRsinaWesternCanadianArcticMarineFoodWeb[J].EnvironmentalScience&Technology,2009,43(11):4076-4081.[30]ConderJM,GobasFAPC,BorgK,etal.UseofTrophicMagnificationFactorsandRelatedMeasurestoCharacterizeBioaccumulationPotentialofChemicals[J].IntegratedEnvironmental——————————————————————————————————————————————— AssessmentandManagement,2012,8(l):85-97.[31]HaukasM,HyllandK,NygardT,etal.Diastereomer-specificBioaccumulationofHexabromocyclododecane(HBCD)inaCoastalFoodWeb,WesternNorway[J].ScienceoftheTotalEnvironment,2010,408(23):5910-5916.[32]PomaG,VoltaP,RoscioliC,etal.ConcentrationsandTrophicInteractionsofNovelBrominatedFlameRetardants,HBCD,andPBDEsinZooplanktonandFishfromLakeMaggiore(NorthernItaly)[J].ScienceoftheTotalEnvironment,2014,481:401-408.[33]ZegersBN,MetsA,vanBommelR,etal.LevelsofHexabromocyclododecaneinHarborPorpoisesandCommonDolphinsfromWesternEuropeanSeas,withEvidenceforStereoisomer-specificBiotransformationbyCytochromeP450[J].EnvironmentalScience&Technology,2005,39(7):2095-2100.[34]LawK,PalaceVP,HalldorsonTHJ,etal.DietaryAccumulationofHexabromocyclododecaneDiastereomersinJuvenileRainbowRout(Oncorhynchusmykiss).I:BioaccumulationParametersandEvidenceof第35卷——————————————————————————————————————————————— [35][36]Bioisomerization[J].EnvironmentalToxicology&chemistry,2006,25(7):1757-1761.DuM,LinL,YanC,etal.Diastereoisomer-andEnantiomer-specificAccumulation,Depuration,andBioisomerizationofHexabromocyclododecanesinZebrafish(Daniorerio)[J].EnvironmentalScience&Technology,2012,46(20):11040-11046.LiB,YaoT,SunH,etal.Diastereomer-andEnantio-mer-specificAccumulation,Depuration,Bioisomerization,andMetabolismofHexabromocyclo-[40][41]Media[J].RockandMineralAnalysis,2012,31(2):210-217.HeM,LuoX,YuL,etal.Tetrabromobisphenol-AandHexabromocyclododecaneinBirdsfromanE-wasteRegioninSouthChina:InfluenceofDietonDiastereoisomer-andEnantiomer-specificDistributionandTrophodynamics[J].EnvironmentalScience&Technology,2010,44(15):5748-5754.SunY,LuoX,MoL,etal.HexabromocyclododecaneinTerrestrialPasserineBirdsfromE-waste,Urbananddodecanes(HBCDs)inTwoEcologicallyDifferentSpeciesofEarthworms[J].ScienceoftheTotalEnvironment,2016,542(PartA):427-434.——————————————————————————————————————————————— [37]LuoXJ,RuanW,ZengYH,etal.TrophicDynamicsofHexabromocyclododecaneDiastereomersandEnantiomersinFishinaLaboratoryFeedingStudy[J].EnvironmentalToxicology&Chemistry,2013,32(11):2565-2570.[38]LiY,ZhouQ,WangY,etal.FateofTetrabromo-bisphenolAandHexabromocyclododecaneBrominatedFlameRetardantsinSoilandUptakebyPlants[J].Chemosphere,2011,82(2):204-209.[39]焦杏春,路国慧,王晓春,等.环境中溴系阻燃剂六溴环十二烷的水平及分析进展[J].岩矿测试,2012,31(2):210-217.JiaoXC,LuGH,WangXC,etal.TheLevelsandAnalyticalDevelopmentsofBrominatedFlameRetardantHexabromocyclodocanesfromVariousEnvironmentalRuralLocationsinthePearlRiverDelta,SouthChina:Levels,Biomagnification,Diastereoisomer-andEnantiomer-specificAccumulation[J].EnvironmentalPollution,2012,171(4):191-198.[42]JanakK,CovaciA,VoorspoelsS,etal.Hexabromocyclo-dodecaneinMarineSpeciesfromtheWesternScheldt——————————————————————————————————————————————— Estuary:Diastereoisomer-andEnantiomer-specificAccumulation[J].EnvironmentalScience&Technology,2005,39(7):1987-1994.[43]EsslingerS,BeckerR,MaulR,etal.Hexabromocyclo-dodecaneEnantiomers:MicrosomalDegradationandPatternsofHydroxylatedMetabolites[J].EnvironmentalScience&Technology,2011,45(9):3938-3944.[44]ZhangY,SunH,RuanY.Enantiomer-specificAccumu-lation,Depuration,MetabolizationandIsomerizationofHexabromocyclododecane(HBCD)DiastereomersinMirrorCarpfromWater:8[J].JournalofHazardousMaterials,2014:264(10)-15.一577—山第6期石http:www.ykcs.ac.cn//矿测试2016年ResearchProgressontheSelectivityandBiomagnificationofChiralHexabromocyclododecanesPollutantsinFoodChainTransferTIANQin1,TONGLing1,SONGShu-ling1,ZHANNan1,PANMeng1,QIUJing2(1.NationalResearchCenterforGeoanalysis,Beijing100037,China;——————————————————————————————————————————————— 2.InstituteofQualityStandard&TestingTechnologyforAgro-Products,ChineseAcademyofAgriculturalSciences,Beijing100081,China)Highlights:?Theselectiveaccumulation,biomagnificationandtransformationofHBCDsdiastereomersandtheirenantiomersinfoodchainwerereviewed.?ThepapermainlysummarizedtheinfluencefactorsofselectivebiomagnificationandtrophictransferofHBCDsinfoodchain.?MoreworkonthebiomagnificationandtrophodynamicsofHBCDsinthefreshwaterandterrestrialfoodwebsshouldbeperformed.Studyontheinfluencefactorsofthediastereoisomer-andenantiomer-specificselectivebiomagnificationinfoodchainshouldbestrengthened,toassesstheecologicalrisksofHBCDs.Abstract:Hexabromocyclododecanes(HBCDs)aregloballyproducedbrominatedflameretardant(BFR)andareusedprimarilyasanadditiveFRinthermalinsulationbuildingmaterials,upholsterytextiles,andelectronics.HBCDsnotonlypollutetheecologicalenvironment,butalsoharmthehealthofhumanbeingsthroughthefoodchain.ThestudyontheenvironmentalfateandbiomagnificationofHBCDsdiastereomersand——————————————————————————————————————————————— enantiomersinfoodchainsisanimportantfoundationforriskassessmentandeffectivepollutioncontrol.ThecharacteristicsofHBCDs?theselectiveaccumulation,biomagnificationandtransformationofHBCDsdiastereomersandtheirenantiomersinfoodchainarereviewedinthispaper.Theinfluencefactorsoftheselectiveaccumulationandtransformationweremostlikelyascribedtothecombinedeffectofseveralaspects,includingthelivingandfeedinghabits,trophicleveloforganisms,andtheselectiveabsorption,metabolismandbioisomerizationofHBCDs.Recentresearchresultsindicatethattheaccumulation,transformationandbiomagnificationsbehaviorofHBCDsdiastereomersandtheirenantiomersintheecologicalsystemisnotasingleprocess?buttheresultofmultiplefactorsofbiologicalandenvironmentalprocesses.FurtherstudieswillfocusontheselectiveenvironmentalbehaviorofHBCDsdiastereomersandenantiomersinthefreshwaterandterrestrialfoodchainsandthecontrolinfluencefactorsoftheselectiveenvironmentalbehaviorduringfoodchainstransfer,whichwillprovideascientificbasisfortheassessmentofenvironmentalrisks.Keywords:hexabromocyclododecanes;foodchain;enantioselectivity;biomagnification—578———————————————————————————————————————————————— ———————————————————————————————————————————————