生物人工肝细胞材料肝细胞株的研究进展论文

　　生物人工肝细胞材料肝细胞株的研究进展论文【关键词】肝细胞株【关键词】肝，人工；肝/细胞学；肝细胞株；永生化程序0引言肝细胞是生物人工肝支持系统的核心原材料，生物人工肝对肝衰竭患者的肝支持作用依赖于所用肝细胞的生物学功能.无论是动物肝细胞还是人肝细胞，在体外培养时均存在生长条件要求严格、存活时间有限、传代困难等缺点.采用永生化程序建立肝细胞株就成为解决生物人工肝细胞来源的重要途径，而永生化的人肝细胞株则可为生物人工肝提供取之不尽的细胞源.现就这一方面的研究进展综述如下.1肿瘤来源的肝细胞株肿瘤来源的肝细胞株是指由肿瘤组织分离、克隆而来的具有某些正常肝细胞功能的细胞株.其中HepG2细胞具有某些类似于正常肝细胞的代谢解毒功能，但细胞的分化功能和分化程度均较低.Khalil等［1］发现，将HepG2细胞包裹于海藻酸珠内，形成内聚性球形集落后可培养20+d.freelasa等［3］将构建的谷氨酰胺合成酶(GS)基因质粒导入无氨清除能力的HepG2细胞，用含甲硫氨酸亚枫(MSX)的培养液选择性培养，获得新的MSX抗性GSHepG2.该细胞株的氨清除能力可达原代肝细胞的四分之一，若提供适量锌离子可使其氨清除能力进一步提高近50%.并且可在循环流式反应器长期培养，细胞数量由107增至109，去氨能力大大增强［4］.GSHepG2细胞型生物人工肝可明显延长肝衰竭动物的存活时间，并可用于长期反复治疗［5］.另外，Yang等［6］将连接蛋白32(Cx32)基因转染到HepG2细胞内，使新的细胞株之间的缝隙连接加强，同时也使其白蛋白分泌和氨清除能力提高2倍以上.Naiki等［7］利用腺病毒将肝细胞核因子4(HNF4)基因导入无氨清除能力的细胞.在新的细胞中，细胞色素P450、谷氨酰胺合成酶、α抗膜蛋白酶、载脂蛋白等基因的表达增加，特别是其氨清除能力提高明显.C3A细胞是从肝母细胞瘤分离获得的类似但分化程度高于HepG2的肝细胞株，在空心纤维生物反应器中接种2gC3A细胞，可在1周内增殖到200g，并具有良好的肝细胞特异功能.但与猪肝细胞相比，C3A细胞株的P450IA1活性、氨清除以及氨基酸代谢等均较低.Filippi等［8］研究显示，利用UoE培养基预处理的C3A后，能显著提高其尿素、白蛋白、葡萄糖等的合成以及半乳糖的清除能力. C3A是目前唯一用于人工肝临床研究的肝肿瘤细胞株，且己有10年之久，取得了较好的效果［9］，但至今未能进一步扩大应用，可能仍主要与安全考虑有关.除了上述细胞外，肿瘤来源肝细胞还有HuH6,JHH2等，也开始了用于生物人工肝的基础研究［10］，二者均能高分泌AFP，白蛋白，表达鸟氨酸氨甲酰基转移酯mRNA和乙醇脱氢酶mRNA.2病毒转染的肝细胞株病毒转染是建立细胞株的常用方法之一，但所建细胞株的肿瘤性质较为突出.OUMS29是一株人胎肝细胞转染PSV3neo质粒获得的含有SV40LargeT肿瘤抗原(SV40Tag)的肝细胞株，表达许多特殊肝脏功能的基因，可明显降低血氨水平，改善肝性脑病，能够为急性肝衰竭模型动物提供代谢支持作用，提高短期生存率［11］.OUMS29细胞株移植入裸鼠并未显示恶性特征，无转移瘤形成，相比之下HepG2细胞可在2RNA表达出现或增多，形态和细胞极性表现出更多的分化肝细胞特征，在免疫严重缺陷鼠体内形成的肿瘤停止生长.这种通过切割有害基因的办法，为肝细胞株的应用提供了新的安全保障.HepZ细胞株也是从肝活检标本中分离、经转染获得的人肝细胞株，该细胞株具有细胞色素P450活性等肝细胞特异性代谢功能，能永久传代且增殖能力强.最近，,ShariatPanbiA,TootleR,etal.Humanhepatocytescelllinesproliferatingascohesivespheroidcoloniesinalginatemarkedlyupregulatebethsyntheticanddetoxificatoryliverfunction［J］.JHepatol,2001,297:68-77.［2］RahmanTM,SeldenC,KhalilM,etal.Alginateencapsulatedhumanhepatoblastomacellsinanextracorporealperfusionsystemimprovesomesystemicparametersofliverfailureinaxenogeneicmodel［J］.ArtifOrgans,2004,28(5):476-482.［3］OmasaT,.freelanakaM,TanimuraN,etal.Expressionandamplificationofglutaminesynthetasegeneendomoniametabolizingactivityforbioartificialliversupportsystem［J］.EnzymeMicrobialTechnol,2004,35:519-524.［4］EnosacultureofglutaminesynthetasetransfectedHepG2cellsincirculatoryfloentofabioartificialliver［J］.CellTransplant,2000,9:711-715.［5］Enosaationofbioartificiallivericliverfailure［J］.CellTransplant,2001,10:429-433.［6］YangJ,Ichikaentofliverfunctioninahepatomacellline［J］.BiochemBiophysResmun,2003,18:307(1):80-85.［7］NaikiT,NagakiM,ShidojiY,etal.Functionalactivityof humanhepatomacellstransfectedediatedhepatocytenuclearfactor(HNF)4gene［J］.CellTransplant,2004,13(4):393-403.［8］FilippiC,keatchSA,RangarD,etal.HayesPC,PlevrisJN.ImprovementofC3Acellmetabolismforusageinbioartificialliversupportsystems［J］.JHepatol,2004,41(4):599-605.［9］DemetriouAA,Broized，multicenter,controlledtrialofabioartificialliverintreatingacuteliverfailure［J］.AnnSurg,2004,239(5):660-667;discussion667-670.［10］KobayashiN,MiyazakiM,FukayaK,etal.Establishmentofahighlydifferentiatedimmortalizedhumanhepatocytecelllineasasourceoffunctioninthebioartificialliver［J］.TransplantProc,2000,32:237-241.［11］KobayashiN,MiyazakiM,FukayaK,etal.Transplantationofhighlydifferentiatedimmortalizedhumanhepatocytestotreatacuteliverfailure［J］.Transplant,2000,69:202-207.［12］KobayashiH,NoguchiH,,uthingJ,etal.CultivationofimmortalizedhumanhepatocytecelllineHepZonmacroporousCultiSpherGmicrocarriers［J］.BiotechnolBioeng,2000,68:59-70.［15］KobayashiN,FujianKA,etal.Preventionofacuteliverfailureinratsmortalizedhumanhepatocytes［J］.Science,2000,287:1258-1262.［16］GuhaC,Chomortalizedhumanhepatocytes:Aneternalfountainofliversupport［J］?Hepatology,2000,32:440-441.［17］KuniedaT,KobayashiN,SakaguchiM,etal.TransductionofimmortalizedhumanhepatocytesanKA,etal.ControlledexpansionofhumanendothelialcellsbvCre/loxPbasedreversibleimmortalization［J］.HumGeneTher,2002,13:321-334.［19］anKA,etal.Establishmentofimmortalizedactivatedhepaticstellatecellstodevelopbioartificiallivers［J］.Transplant,2003,75:1873-1880.